Раз в месяц мы отправляем дайджест с самыми популярными статьями.

Влияние тетрахлорметана на состояние процессов липопероксидации крови и печени крыс

С.Ю. Большухин, С.П. Перетягин, А.К. Мартусевич, А.Г. Соловьева

ФГБУ «Приволжский федеральный медицинский исследовательский центр» Минздрава России

Биорадикалы и Антиоксиданты. Том 1, №1, Стр. 59-66

Key words: intoxication, carbon tetrachloride, lypoperoxidation, hepatitis, cirrhosis

Ключевые слова: интоксикация, тетрахлорметан, перекисное окисление липидов, гепатит, цирроз

На 60 крысах-самцах линии Вистар введением тетрахлорметана (ТХМ) моделировали острый токсический гепатит, хронический гепатит и цирроз печени. Определяли концентрацию диеновых конъюгатов и малонового диальдегида в плазме крови, эритроцитах и гомогенате печени. Установлено, что интоксикация ТХМ приводит к сдвигу липопероксидации в ранние сроки после введения токсина. Наиболее выраженная активация липопероксидации наблюдается в гомогенате печени. Длительная интоксикация ТХМ увеличивает выраженность нарушений окислительного метаболизма.

We modeled toxic acute and chronic hepatitits and cirrhosis on 60 Vistar line rats by carbon tetrachloride (CTC) injections. Dien conjugates and malon dialdehyde was tested in blood plasma, erythrocytes and liver homogenates. It was stated, that CTC intoxication leaded to lypoperoxidation changes in early period after CTC injection. Strongly pronounced activation of lypoperoxidation was found in liver homogenates. It was shown, that prolonged CTC intoxication is a risk factor of oxidative stress chronization.

  1. Арутюнян А.В., Дубинина Е.Е., Зыбина Н.Н. Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма. СПб.: ИКФ «Фолиант», 2000. 104 с.
  2. Буеверов А.О. Оксидативный стресс и его роль в повреждении печени // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2002. №4. С. 21-25.
  3. Венгеровский А.И., Батурина П.О., Чучалин B.C. Роль перекисного окисления липидов в механизме пролиферации фиброзной ткани печени при экспериментальном хроническом гепатите // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1996. №2. С. 37-39.
  4. Саратиков А.С., Венгеровский А.И. Влияние гепатопротекторов, содержащих фосфолипиды, на зависимую от цитохрома Р-450 антитоксическую функцию печени при экспериментальном токсическом гепатите // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1999. Т. 127, №4. С. 392-394.
  5. Скровцов В.В. Пероксидация липидов и антиоксидантная система в гепатологии // Гепатология. 2003. №3. С. 7-13.
  6. Цапок П.И. Метод обработки эритроцитарных мембран для биохимических исследований // Информационный листок Кировского ЦНТИ № 72-99. Киров. 1999. 3 с.
  7. Шилова И.В., Жаворонок Т.В., Суслов Н.И., Новожеева Т.П., Мустафин Р.Н., Лосева А.М. Гепатозащитные свойства фракций экстракта лабазника вязолистного при экспериментальном токсическом гепатите // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. Т. 146, №7. С. 54-57.
  8. Liss G., Lewis J.H. Drug-induced liver injury: what was new in 2008? // Expert Opin Drug Metab Toxicol. 2009. Vol. 5, №8. Р. 843-860.
  9. Morita M., Akai S., Hosomi H., Tsuneyama K., Nakajima M., Yokoi T. Drug-induced hepato-toxicity test using gamma-glutamylcysteine synthetase knockdown rat // Toxicol. Lett. 2009. Vol. 189, №2. Р. 159-165.
  10. Pera N., Phung N., Farrel G.C. Oxidative stress in hepatic fibrogenesis: implications from a nutritional model of nonalcoholic steatohepatitis // Hepatology. 1999. Vol. 30. P. 493-494.
Полный текст статьи